Pages On This Site

Home Page

Main Files
 • Home
 • Author
 • Histotechnology
 • MSDS & Safety
 • Links
 • Using StainsFile
 • Translating pages

Indexes
 • Dyes by name
 • Dyes by CI number
 • Staining methods
 • Hematoxylin solutions
 • Trichrome staining methods
 • Metallic impregnations
 • Schiff's reagent
 • Solutions
 • Tissue preparation
 • Fixing agents
 • Fixing agent safety
 • Fixatives
 • Alphabetical Fixatives
 • Fixatives by Type
 • Preservatives
 • Paraffin Processing
 • Other Processing
 • Adhesives
 • Mountants

Dye Classes
 • Dye Classes
 • Dye classes - Gurr
 • Dye classes - formulae
 • Acid
 • Amphoteric
 • Basic
 • Direct
 • Mordant
 • Natural
 • Neutral
 • Solvent
 • Acridine
 • Anthraquinone
 • Arylmethane
 • Azos
 • Diazo
 • Nitro
 • Phthalocyanine
 • Quinone-imine
 • Tetrazolium
 • Thiazole
 • Xanthene

Dyes
 • Acid fuchsin
 • Acridine orange
 • Acridine red
 • Acriflavine
 • Alcian blue
 • Alcian yellow
 • Alizarin
 • Alizarin blue
 • Alizarin cyanin BBS
 • Alizarin red S
 • Alkali blue 5B
 • Amido black 10B
 • Aniline blue WS
 • Anthracene blue SWR
 • Auramine O
 • Azocarmine
 • Azo-eosin
 • Azophloxine
 • Azure A
 • Azure B
 • Azure C
 • Basic fuchsin
 • Benzo scarlet 4BNS
 • Biebrich scarlet
 • Bismarck brown Y
 • Brazilin
 • Brilliant cresyl blue
 • Celestin blue B
 • Chrome fast yellow 8GL
 • Chrome violet CG
 • Chromotrope 2R
 • Chromoxane cyanin R
 • Congo corinth G
 • Congo red
 • Coomassie fast yellow G
 • Crystal violet
 • Durazol blue 4R
 • Durazol blue 8G
 • Eosin B
 • Eosinol
 • Eosin Y
 • Erythrosin B
 • Ethyl eosin
 • Ethyl green
 • Ethyl violet
 • Evans blue
 • Fast blue B
 • Fast green FCF
 • Fast red B
 • Fast yellow
 • Fluorescein
 • Gallamin blue
 • Gallein
 • Gallocyanin
 • Hematoxylin
 • Hoffman's violet
 • Iodine green
 • Iodonitrotetrazolium
 • Kermes
 • Lac
 • Light green SF yellowish
 • Lissamine fast red
 • Lissamine fast yellow
 • Lissamine flavine FF
 • Lissamine rhodamine B
 • Luxol fast blue MBS
 • Magenta II
 • Malachite green
 • Martius yellow
 • Mauveine
 • Metanil yellow
 • Mercurochrome
 • Methyl blue
 • Methylene blue
 • Methylene green
 • Methyl green
 • Methyl violet 2B
 • Milling yellow 3G
 • Naphthalene blue black CS
 • Naphthol green B
 • Naphthol yellow S
 • Neutral red
 • New fuchsin
 • Night blue
 • Nile blue A
 • Nitro blue tetrazolium
 • Nuclear fast red
 • Oil red O
 • Orange G
 • Orcein
 • Pararosanilin
 • Phloxine B
 • Picric acid
 • Ponceau 6R
 • Ponceau S
 • Primuline
 • Purpurin
 • Pyronin B
 • Pyronin Y
 • Rhodamine B
 • Rosanilin
 • Rose bengal
 • Saffron
 • Safranin O
 • Sirius red 4B
 • Sirius red F3B
 • Sirius scarlet GG
 • Sudan III
 • Sudan IV
 • Sudan black B
 • Sun yellow
 • Tartrazine
 • Thioflavine T
 • Thioflavine S
 • Thionin
 • Toluidine blue O
 • Trypan blue
 • Victoria blue 4R
 • Victoria blue B
 • Victoria blue R
 • Water blue
 • Woodstain scarlet
 • Xylidine ponceau

Comparison
 • Basic fuchsin constituents
 • Direct dyes for amyloid
 • Eosins
 • Fuchsins & Methyl violets
 • Insect dyes
 • Lysochromes
 • Methyl green
 • Methylene blue
 • Naphthalene blu blk & Amido black
 • Orcein
 • Phthalocyanines
 • Pyronins
 • Victoria blue

Fixation
 • Introduction to fixation
 • Alternatives to fixation
 • Fixative Properties
 • Additive & coagulant
 • Formalin terminology
 • Mercury disposal
 • Fixatives comparison
 • Post chromation
 • Post osmication
 • Secondary fixation

Fixing agents
 • Acetic acid
 • Acetone
 • Chromic acid
 • Dichromate
 • Ethanol
 • Formaldehyde
 • Glutaraldehyde
 • Methanol
 • Mercuric chloride
 • Osmium tetroxide
 • Picric acid
 • Trichloroacetic acid
 • Zinc chloride
 • Other agents

Safe working
 • Acetic acid
 • Acetone
 • Chromium compounds
 • Ethanol
 • Formaldehyde
 • Glutaraldehyde
 • Methanol
 • Mercuric chloride
 • Osmium tetroxide
 • Picric acid
 • Zinc chloride

Fixation Artifact
 • Artefact definition
 • Ethanol artifact
 • Formalin pigment
 • Mercury pigment
 • Restoring natural colour

Fixatives
 • Aoyama
 • B5
 • Behrens
 • Bouin picro formal acetic
 • Carnoy
 • Chamberlain
 • Champy
 • Clarke
 • Duboscq-Brasil
 • Flemming
 • 10% Formal alcohol
 • Formal ammonium bromide
 • 10% Formal calcium
 • 10% Neutral buffered formalin
 • 10% Formalin and formal saline
 • Formal sublimate
 • 10% Formal sucrose
 • Formalin-Picric-Trichloroacetic
 • Gendre
 • Gilson
 • Glutaraldehyde
 • Gomori 1-2-3
 • Helly
 • Hollande
 • Lebrun
 • Mann
 • Methacarn
 • Müller
 • Navishin
 • Carnoy
 • Ohlmacher
 • Orth
 • Formalin from paraformaldehyde
 • Picro mercuric alcohol
 • Randolph
 • Rossman
 • Ruffini
 • Schaudinn
 • Stieve
 • SuSa
 • Luko, Tellyesniczky
 • Van der Grift
 • Worcester
 • Zenker
 • Zinc formalin

Preservatives
 • Formalin
 • Glycerol
 • Kaiserling
 • Spirits of wine

 

Dehydration
 • Dehydrants
 • Dehydration
 • Acetone
 • Ethanol
 • Methylated spirits
 • Methanol
 • Propanols

Clearing
 • Clearing
 • Alkanes
 • Aromatic hydrocarbons
 • Chloroform and others
 • Terpenes

Paraffin Wax
 • Paraffin wax infiltration
 • Automated processing
 • Automated - overnight
 • Automated - rapid
 • Manual processing
 • Manual - thorough
 • Manual - routine
 • Manual - rapid
 • Manual - urgent
 • Clearant free infiltration

Other Processing
 • Celloidin
 • Celloidin paraffin
 • Gelatin paraffin
 • Ester wax
 • Polyester wax
 • Water soluble wax

Adhesives
 • Amylopectin
 • Celloidin
 • Egg albumen
 • Gelatin
 • Chrome gelatin
 • Gum
 • Plasma & serum
 • Starch
 • White glue
 • Other
 • Charged slides

Mounting Media
 • Acrylic
 • Aqueous gum Arabic
 • Glycerol gelatin
 • Gum Sandarac
 • Natural resins
 • PVP
 • Sugar
 • Synthetic resins
 • Refractive Index
 • Ringing

Amyloid
 • Amyloid
 • Lendrum et. al. alcian blue
 • Direct dyes for amyloid
 • Bennhold's congo red
 • Eastwood & Cole's congo red
 • Congo red fluorescence
 • Highman's congo red
 • Puchtler et. al. congo red
 • Stokes' congo red
 • Sweat & Puchtler's sirius red
 • Llewellyn's sirius red
 • Fluorescence for amyloid
 • Burns et. al. thioflavine T
 • Vassar & Culling's thioflavine T
 • Thioflavine S
 • Guntern Thioflavine S
 • Metachromasia of amyloid
 • Bancroft's crystal violet
 • Bancroft's methyl green
 • Birch-Hirschfeld's crystal violet
 • Highman's crystal violet
 • Jurgens crystal violet
 • Lendrum's methyl violet
 • DMAB-Nitrite for tryptophan
 • Metallic impregnations
 • King's silver impregnation
 • Lynch & Inwood's gold impregnation

Brazilin
  Bensley’s PTAB

Bone
 • Alizarin red S for calcium
 • Von Kossa for calcium

Carbohydrate
 • Carbohydrates
 • CEC
 • Hale's colloidal iron
 • Mowry's Colloidal iron
 • Mayer's mucicarmine
 • Mayer's mucihematein
 • Ritter & Oleson colloidal iron
 • Standard PAS
 • Lillie's short PAS
 • Lillie's long PAS
 • Fluorescent PAS
 • Double oxidation PAS
 • Bauer
 • Fluorescent Bauer
 • PA-Thiosemicarb-Schmorl
 • Jones methenamine silver
 • Gomori methenamine silver

Cell inclusions
 • Aldehyde toluidine blue – mast cells
 • Leder – mast cells
 • Carbol chromotrope – eosinophils
 • Hitchcock Ehring – plasma cells
 • Maxwell – pituitary cells
 • Phloxine Tartrazine – VIB
 • Yellowsolve II – cell inclusions

Cytological stains
 • Boone & Drijver's alcoholic
 • Papanicolaou
 • Papanicolaou's alcoholic

Trichromes
 • Trichrome variants
 • What is a trichrome
 • Masson
 • Original Masson
 • Variants by Masson
 • Yellow Masson
 • Masson variants
 • Shoobridge's polychrome
 • Bensley
 • Brillmeyer
 • Cason
 • Crossman
 • Duprès
 • Engel & Cunningham
 • Goldner
 • Gomori
 • Haythorne
 • Heidenhain
 • Hollande
 • Klatskin
 • Kohashi
 • Koneff
 • Kostowiecki
 • Kricheski
 • Ladewig
 • Laidlaw
 • Lee-Brown
 • Lendrum & McFarlane
 • Lendrum et. al.
 • Lewis & Miller
 • Lillie
 • Mallory
 • McFarlane I
 • McFarlane II
 • McFarlane III
 • Milligan
 • Möllendorf
 • Mollier
 • Paquin & Goddard
 • Pasini
 • Patay
 • Pollak
 • Roque
 • Sweat, Meloan & Puchtler
 • Wallart & Honettte
 • Walter
 • Weiss

Picro-fuchsin
 • Herovici
 • van Gieson
 • Picro-fuchsin type
 • Puchtler picro-sirius red
 • Picro-Fuchsin variants

Elastic
 • Elastic
 • Methods - Orcien
 • Methods - Iron Resorcin
 • Methods - Aldehyde Fuchsin
 • Methods - Iron Hematoxylin
 • Methods - Miscellaneous
 • Akita & Kaneko
 • Cook & Lamb
 • Brown & Brenn counterstain
 • Dahlia-iron-resorcin
 • French
 • Gomori
 • Gabe
 • Fullmer & Lillie
 • Hart
 • Humberstone
 • Kohashi's trichrome
 • Miller
 • Mollier's trichrome
 • Musto – Van Gieson
 • Musto – scarlet-saffron
 • Pasini
 • Sheridan
 • Taenzer-Unna
 • Unna
 • Walter's trichrome
 • Verhoeff
 • Weigert

Fibrin
 • Fibrin
 • Fuchsin-Miller
 • Masson 44/41
 • MSB
 • Obadiah
 • Picro-Mallory - long
 • Picro-Mallory - short
 • Yellowsolve I

Amino acids
 • DMAB-Nitrite for tryptophan

General
 • Iodine-hypo
 • Mallory bleach
 • Meter's Eosin

Hematoxylin
 • Hematoxylin
 • Ripening hematoxylin
 • Formulating Hemalum
 • Hematoxylin:aluminum ratios
 • Hematoxylin overview
 • H & E staining
 • H & E – Hemalum
 • H & E – Eosin

Aluminum Hematoxylin
 • Anderson
 • Apathy
 • Baker
 • Bennett
 • Bencosme
 • Bohmer
 • Bosma
 • Bullard
 • Carazzi
 • Cole
 • Debiden
 • de Groot
 • Delafield
 • Duval
 • Ehrlich
 • Friedlander
 • Gadsdon
 • Gage
 • Galigher
 • Garvey
 • Gill
 • Graham
 • Hamilton
 • Harris
 • Harris & Power
 • Haug
 • Hine's for blocks
 • Horneyold
 • Kleinenberg
 • Krutsay
 • Langeron
 • Launoy
 • Lee
 • Lillie
 • Lugol
 • Mallory
 • Mallory & Wright
 • Mann
 • Martinotti
 • Masson
 • Mayer
 • McLachlan
 • Mitchell
 • Molnar
 • Papamiltiades
 • Pusey
 • Rawitz
 • Reddy
 • Sass
 • Schmorl
 • Scott
 • Slidders
 • Unna
 • Watson

 

Iron Hematoxylin
 • Anderson
 • Crétin
 • Faure
 • Goldman
 • Hansen
 • Heidenhain
 • Heidenhain type
 • Janssen
 • Kefalas
 • Krajian
 • La Manna
 • Lillie
 • Lillie & Earle
 • Masson
 • Morel & Bassal
 • Murray
 • Paquin & Goddard
 • Régaud
 • Rozas
 • Seidelin
 • Thomas
 • Weigert
 • Yasvoyn

Other Hematoxylins
 • Bensley - Copper
 • Cook - Copper
 • Heidenhain - Vanadium
 • Held - Molybdenum
 • Mallory - PTAH
 • Roach & Smith - Bismuth
 • Shum & Hon - PTAH
 • Smith - Vanadium
 • Smith - Zirconium

Lipid
 • Lipids
 • Chiffelle & Putt

Polychrome methods
 • Garvey
 • Garvey-Movat
 • Silverman-Movat
 • Vanderbilt - GI bx

Microorganisms
 • AAFB - Kuper May (fluorescent)
 • AAFB - Fite
 • AAFB - Kinyoun
 • AAFB - Verhoeff ZN
 • AAFB - Ziehl Neelsen
 • AFB - Adams
 • AFB - Fite Faraco
 • AFB - Putt
 • AFB - Wade Fite
 • Fungi - CAFS
 • Fungi - Chick
 • Gomori methenamine silver
 • Fungi - Gridley
 • Fungi - Ox-Thiosemicarb-Schmorl
 • Gram-Churukian
 • Gram-Weigert
 • Helicobacter - alcian yellow
 • Helicobacter - Sayeed
 • Helicobacter - Toluidine Blue
 • Helicobacter & malaria - Field
 • Malaria - Jenner-Giemsa
 • Rabies - Alloxan-schiff

Neurological methods
 • Kiernan - myelin
 • MacFarland & Davenport - adrenal
 • Palmgren - peripheral nerves

Nuclear stains
 • Celestine blue Hemalum
 • Lendrum - celestine blue
 • Proescher & Arkush - celestine blue
 • Duprès magenta
 • Gallocyanin chrome alum
 • Gallego carbol fuchsin
 • Kiernan eriochrome cyanin I
 • Kiernan eriochrome cyanin II
 • Llewellyn mordant blue 3
 • Neutral red
 • Nuclear fast red

Nucleic acids
 • Nucleic acids
 • Nucleal reaction
 • Trevan & Sharrock MGP

Oversight
 • AFIP HPS
 • Bencosme's HPS
 • HPS variant
 • Masson's HES
 • McNamara's Giemsa
 • Romanowsky – Giemsa
 • Wolbach's Giemsa
 • Modified yellowsolve

Stains for pigment
 • Asbestos
 • Perls Prussian blue - iron
 • Howell rubeanic acid - copper
 • Schmorl - reducing substances
 • Turnbull blue - iron

General solutions
 • Aniline water
 • Carbol fuchsin
 • Colloidal iron
 • Lugol’s iodine
 • Pal bleach
 • Scott's water
 • Weigert bleach

Schiff reagents
 • Original
 • Alexander
 • Barger & de Lamater
 • Coleman
 • de Tomasi
 • Feulgen & Rossenbeck
 • Fluorescent
 • Galassi
 • Itikawa & Oguru
 • Kasten & Burtons
 • Lillie's cold
 • Lillie
 • Menzies

Schiff
 • Schiff reagent?
 • Periodic acid
 • Nucleal reaction
 • PAS reaction
 • Plasmal reaction
 • Protein reaction
 • Blocking aldehydes
 • Standard PAS
 • Bauer CAS
 • Feulgen
 • Lillie's short PAS
 • Lillie's long PAS
 • Lillie acetylation
 • Lillie aldehyde block
 • Lillie amylase digest
 • Lillie benzoylation
 • Lillie celloidin
 • Lillie deacetylation
 • Lillie methylation
 • Lillie protease digest
 • Lillie reducing rinses
 • Lillie lipid extraction
 • Lillie sulphite rinses
 • Lillie Allochrome
 • McManus PAS
 • PAFS

Non-Schiff methods
 • Alternatives to Schiff's reagent
 • Naphthoic acid hydrazide
 • Jones methenamine silver

Staining theory
 • Accentuators
 • Bond types
 • Degreasing
 • Differentiation
 • Dipoles
 • Fixation
 • Gram stain
 • Lysochromes
 • Mass action
 • How mordants work
 • What a mordant is not
 • Solvents
 • Science of staining
 • Trapping agents
 • Trichromes
 • Trichrome - Dye state
 • Trichrome - Polyacids
 • Trichrome - Tissue state
 • Yellowsolve

Metallic impregnation
 • Silver
 • Non-silver
 • Making ammoniacal silver
 • Working safely

Reticulin impregnation
 • Bensley & Bensley
 • del Carpio
 • Foot
 • Gluck
 • Gomori
 • Gordon & Sweet
 • Gridley
 • Jalowy
 • Laidlaw
 • Levi
 • Lillie
 • Maresch
 • Nassar & Shanklin
 • Robb-Smith
 • Studricka
 • Wilder
 • Zimmerman

Basic sciences
 • Amino acids
 • Benzene
 • Periodic table
 • Periodic table - Javacript
 • Protein

Elements

 • actinium
 • aluminum
 • americium
 • antimony
 • argon
 • arsenic
 • astatine
 • barium
 • berkelium
 • beryllium
 • bismuth
 • bohrium
 • boron
 • bromine
 • cadmium
 • caesium
 • calcium
 • californium
 • carbon
 • cerium
 • chlorine
 • chromium
 • cobalt
 • copper
 • curium
 • darmstadtium
 • dubnium
 • dysprosium
 • einsteinium
 • erbium
 • europium
 • fermium
 • fluorine
 • francium
 • gadolinum
 • gallium
 • germanium
 • gold
 • hafnium
 • hassium
 • Helium
 • holmium
 • hydrogen
 • indium
 • iodine
 • iridium
 • iron
 • krypton
 • lanthanum
 • lawrencium
 • lead
 • lithium
 • lutetium
 • magnesium
 • manganese
 • meitnerium
 • mendelevium
 • mercury
 • molybdenum
 • neodymium
 • neon
 • neptunium
 • nickel
 • niobium
 • nitrogen
 • nobelium
 • osmium
 • oxygen
 • palladium
 • phosphorus
 • platinum
 • plutonium
 • polonium
 • potassium
 • praeseodymium
 • promethium
 • protactinium
 • radium
 • radon
 • rhenium
 • rhodium
 • roentgenium
 • rubidium
 • ruthenium
 • rutherfordium
 • samarium
 • scandium
 • seaborgium
 • selenium
 • silicon
 • silver
 • sodium
 • strontium
 • sulphur
 • tantalum
 • technetium
 • tellurium
 • terbium
 • thallium
 • thorium
 • thulium
 • tin
 • titanium
 • tungsten
 • ununbium
 • ununhexium
 • ununoctium
 • ununpentium
 • ununquadium
 • ununseptium
 • ununtrium
 • uranium
 • vanadium
 • xenon
 • ytterbium
 • yttrium
 • zinc
 • zirconium

Histological elements

 • Aluminum
 • Calcium
 • Carbon
 • Chlorine
 • Chromium
 • Copper
 • Gold
 • Iodine
 • Iron
 • Lithium
 • Magnesium
 • Manganese
 • Mercury
 • Molybdenum
 • Nitrogen
 • Osmium
 • Silver
 • Sulphur
 • Tungsten
 • Zinc

Photographs
 • Progressive H&E – 40x100x400x
 • Progressive MBE – 40x100x400x

Downloads
 • Download list

 


Translate in
Google Translate
Instructions